実験の流れ

1.　抗体（抗原）コート

2.　ブロッキング

3.　サンプル調製と反応

4.　検出抗体との反応

5.　検出と測定

市販のELISAプレートを準備します。
自作の場合はELISA用プレートに抗体（抗原）をコートします。
室温で約1時間反応します。

抗体（抗原）が吸着しなかった部位をブロッキングします。
コート後のプレートに添加し、室温で約1時間反応します。

標準物質の希釈系列を作製し、目的サンプルを適宜希釈して調製します。
ブロッキング後のプレートに添加し、室温で約1時間反応します。

サンプルを除去して洗浄し、検出用抗体（抗原）を添加します。
室温で約1時間反応します。

検出用抗体（抗原）を除去して洗浄し、基質を添加します。
プレートリーダー等で発光/蛍光/発色値を測定します。

実験方法

5-1. 試薬の調製

コート用希釈液（約20 mL必要です）

50 mM Carbonate buffer（炭酸バッファー）/pH9.6
0.15 gのNa2CO3と0.29gのNaHCO3を蒸留水に添加して混合し100mLにメスアップします。

ブロッキング溶液（約250 mL必要です）

AE-1475 EzBlock Chemi  （5×Conc.）、AE-1476 EzBlock BSA（5×Conc.）、AE-1477 EzBlock CAS（5×Conc.） 
原液を蒸留水で5倍希釈します。ELISAプレートの場合、Tween 20を添加する必要はありません。詳細は取扱説明書をご参照ください。
※自作する場合は1％BSA含有PBSなどを使用します。

洗浄液（抗体希釈にも使用可能）

WSE-7430 EzPBS(-) （10×Conc.）、WSE-7230 EzTBS（10×Conc.)、WSE-7235 EzTween （10%）
原液を蒸留水で10倍希釈し、終濃度0.05～0.1％Tween 20（洗浄液には必須）を添加して混合します。詳細は取扱説明書をご参照ください。
※自作する場合は0.1％Tween 20含有PBSなどを使用します。

検出試薬

WSE-7145 EzELISA TMB、WSE-7110 EzWestLumiOne、WSE-7120L EzWestLumi plus
使用方法は各取扱説明書をご参照ください。
※使用する検出用抗体の標識酵素に応じた基質を準備します。基質により検出方法（呈色・発光・蛍光）や測定波長が異なりますので、ご注意ください。
※自作する場合は0.5-1 mg/mL o-phenylenediamine/50mM phosphate-citrate buffer (pH5.0)/0.03% H2O2などの基質と反応停止液（2～3 M H2SO4など）を使用します。​​​​​​

抗体（コート用と検出用）

コート（キャプチャー）用抗体と検出用抗体
検出用抗体が標識されていない場合は、検出用抗体に対する標識抗体で間接的に検出します。

5-2.　抗体コート

1. コート（キャプチャー）用抗体をコート用希釈液で2～10 µg/mLに希釈して、約10 mLに調製します。
   抗体がウェルの壁面になるべく付着しないように、底面にチップの先を付けるようにして、ゆっくり入れます。96ウェルのELISAプレートの1ウェル当たりに必要な抗体量は100 µLです。固相の表面加工によって違いますが、抗体の吸着量は400~600 ng/ウェルといわれています。
2. 工程１の希釈した抗体溶液を96ウェルプレートの1ウェル当たり100 µL添加します。
   室温で1時間以上、あるいは4℃でO/Nインキュベートします。抗体により吸着条件が異なります。温度や時間などの条件により、検出感度や測定領域などが変わる場合がありますので、ご注意ください。
3. コート用抗体をアスピレーターなどを使用して除去し、洗浄液（PBS-Tなど）を250 µL/ウェル添加します。
   洗浄液を除去し、もう一度、洗浄液を250 µL/ウェル添加します。この操作を３回繰り返してプレートを洗浄します。コートした抗体がウェルの壁面や底面以外の部位に付着しないようにするため、アスピレーターやピペットで吸引して除去します。洗浄液はウェルを逆さにして振ることで廃液することもできます。また洗浄液を入れた洗瓶などを使用し、直接各ウェルに十分量注ぎ入れて洗浄することもできます。洗浄液はペーパータオルなどにプレートを叩きつけて、充分に水切りしてください。

5-3.　ブロッキング

1. ブロッキング溶液を96ウェルプレートの1ウェル当たり250 µL添加します。室温で約1時間インキュベートします。
   反応温度や反応時間などの条件により、検出感度や測定領域などが変わる場合がありますので、ご注意ください。
2.  ブロッキング溶液を除去し、洗浄液（PBS-Tなど）を250 µL/ウェル添加して、上述と同様の操作で洗浄します。洗浄操作を3～4回繰り返してプレートを洗浄します。
   ブロッキング溶液および洗浄液はペーパータオルなどにプレートを叩きつけて、充分に水切りしてください。
   コートした抗体（抗原）にも依りますが、ブロッキング液を除き、乾燥させた状態で冷蔵保存可能です。

液切りはしっかりと！ 洗浄語などはペーパータオルにプレートをたたきつけて、しっかり液切りします。プレートウォッシャーを使用した場合も同様です。

5-4.　サンプル調製と反応

1. 測定するサンプルを洗浄液などで適宜希釈します。またターゲットとなるタンパク質濃度が分かる標準物質を洗浄液などで希釈し、標準曲線を作製するための希釈系列を作製します。
2. 標準物質の希釈系列、およびサンプルを96ウェルプレートの1ウェル当たり100 µL添加します。室温で約1時間インキュベートします。
   反応温度や反応時間などの条件により、検出感度や測定領域などが変わる場合がありますので、ご注意ください。
3. 標準物質とサンプルをアスピレーターなどを使用して除去し、洗浄液（PBS-Tなど）を250 µL/ウェル添加して、上述と同様の操作で洗浄します。洗浄操作を3～4回繰り返してプレートを洗浄します。
   標準物質やサンプルが他のウェルやウェルの壁面などに付着しないようにするため、アスピレーターやピペットで吸引して除去します。洗浄後の洗浄液はペーパータオルなどにプレートを叩きつけて、充分に水切りしてください。

5-5.　検出用抗体との反応

1. 検出用の酵素標識抗体を洗浄液などで適宜希釈します。
   酵素標識抗体がポリクローナル抗体や高力価の二次抗体（IgG等に対する）などの場合、交差反応が生じることやバックグラウンドが高くなることがあります。ブロッキング溶液、もしくはブロッキング溶液を洗浄液で1/2～1/10希釈した溶液で、酵素標識抗体を希釈すると軽減できる場合があります。
2. 検出用の酵素標識抗体を96ウェルプレートの1ウェル当たり100 µL添加します。室温で約1時間インキュベートします。
   反応温度や反応時間などの条件により、検出感度や測定領域などが変わる場合がありますので、ご注意ください。
3. 検出用の酵素標識抗体をアスピレーターなどを使用して除去し、洗浄液（PBS-Tなど）を250 µL/ウェル添加して、上述と同様の操作で洗浄します。洗浄操作を3～4回繰り返してプレートを洗浄します。
   酵素標識抗体が他のウェルやウェルの壁面などに付着しないようにするため、アスピレーターやピペットで吸引して除去します。洗浄後の洗浄液はペーパータオルなどにプレートを叩きつけて、充分に水切りしてください。

TMB基質の波長スペクトルの変化 酵素反応が開始されると、 370nmと652nmに極大波長をもつ青色に変化します。このままでも測定可能ですが、STOP solutionを添加すると反応が停止して、直ちに 450nmに極大波長をもつ黄色に変化します。

5-6.　検出と測定

1. 検出用抗体の標識酵素に対する基質溶液を96ウェルプレートの1ウェル当たり50～100 µL添加します。
   発光基質や蛍光基質を使用する場合は、基質溶液を添加してすぐに測定します。
2. 室温（暗所）で約5～30分間インキュベートします。
   ご使用になる基質によって反応時間、温度などの反応条件は異なりますので、ご注意ください。
3. 反応停止溶液を96ウェルプレートの1ウェル当たり50～100 µL添加します。
   ご使用になる基質によって反応時間、温度などの反応条件は異なりますので、ご注意ください。
4. プレートリーダー等の計測機器で吸光度（もしくは発光/蛍光）を測定します。
   下表は、主な基質の測定波長などが示されています。詳細はご使用になる酵素や基質の添付文書などを参照してください。

TMB基質の発色変化 プレートの左側2列（青～青緑）は反応停止前のTMB基質の発色です。反応停止液を添加すると、直ちに黄色に変化します（3列目から右側）。

解析方法

ELISA法の解析方法には定量的解析法、半定量的解析法と定性的解析法があります。

定量的分析（Quantitative）

標準物質を段階希釈して得た測定値を使用して標準曲線を作成します。標準曲線からサンプル中に含まれる標的分子の濃度を換算し、定量的に解析します。標準物質がない場合、もしくは標準曲線の作成が難しい場合など、リファレンスに対して増減を相対的に評価する半定量的解析方法もあります。

定性的分析（Qualitative）

陽性・陰性判定の閾値（カットオフ値）を設定し、サンプル中に標的分子が存在するか「陽性」、しないか「陰性」を定性的に解析します。標的分子の存在の有無は、ネガティブコントロールやポジティブコントロール、あるいはキャリブレーションコントロールとサンプルの測定値を比較し、定性的に判断します。

検量線作成（Calibration curve）

標準物質を階段希釈し（4点以上の濃度）、各濃度を3点以上、測定波長とプレート由来のバックグラウンドを減算するためのリファレンス波長を測定します。ブランクサンプル（溶媒・希釈液等）の値も測定し、各測定値からその値を減算します。一般的にELISA法では4又は5パラメーターロジスティックが使用されますが、測定範囲、標準物質の希釈率、抗体の力価、酵素の検出感度などにより、様々な検量線（標準曲線）が利用されます。データの適合性を評価するために計算される相関係数（R：correlation coefficient）は-1＜R＜1の範囲の値になり、0のときは相関性がなく、1（又は-1）のときは直線上にデータが並びます。R2値が0.99以上の値を示した場合はとても適合性が高い検量線であると判断できます。

検量線で使用される主な近似曲線

実験データ例

ブロッキング剤による影響

ウサギIgGの20 ng/mLからの1/4希釈系列をELISA用96ウェルプレートにコートし、室温で1時間ブロッキングしました。HRP標識抗ウサギIgG抗体との反応後、HRP用発色基質 により検出し、450nmの吸光度を測定しました。グラフは作成した標準曲線を示しています。いずれのブロッキング試薬を使用しても同様に、広い直線性ダイナミックレンジを示しています。

基質による検出感度の違い

HRP標識抗ウサギIgGの1000 pg/mLからの1/2希釈系列を作製し、50 µL/ウェル添加した後、3種類のHRP発色基質で検出しました。右上グラフは30分後に酵素反応を停止して、各基質に適した吸光度（TMB ；450 nm、OPD；490nm、ABTS；410nm）を測定した結果を示しています。

基質による検出感度の違い

ウサギIgGの20 ng/mLからの1/4希釈系列をELISA用96ウェルプレートにコートし、室温で1時間ブロッキングしました。HRP標識抗ウサギIgG抗体との反応後、HRP用発光基質 により検出しました。右下グラフはPhelios ALで発光測定し、解析した結果を示しています。EzWestLumiOneはS/N比、直線性も高く検出できます。加えてEzWestLumi plusはさらに高感度に低濃度の抗原を検出できます。

ELISA法による大腸がん細胞株のHuman SCFの測定

大腸がん細胞株中で発現しているSCF (Stem Cell Factor) 量をサンドイッチELISAキットで測定した結果を示しています。 SCFは血液幹細胞や他の組織(細胞)にも発現が見られ、 悪性腫瘍で過剰発現が観察されるとの報告があります。悪性度が高いといわれているColo205やHCT116細胞株の方が、より発現量が高い結果が示されました。